Перегляд одного допису
Старий 07.01.2010, 16:55   #7
Doc-tor
Живу на форумі
 
Аватар для Doc-tor
Varpalota-Ungvar, Hungary
 

Реєстрація: 19.04.2009
Дописи: 2.977
Подякував(ла): 2.996
Подякували 11.285 разів в 2.411 дописах
Репутація: 6415

Акваріуміст року Активність Меценат Акваріуміст року 

Типово Re: Ю.А.Корзюков - Болезни аквариумных рыб

Глава III. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ БОЛЕЗНЕЙ РЫБ Сотрудничество с московскими клубами аквариумистов и многими любителями экзотических рыб показало, что заразные и незаразные болезни имеют широкое распространение в комнатных водоемах и довольно часто приводят к массовой гибели рыб.

Выбор эффективного метода лечения в первую очередь зависит от правильно поставленного диагноза. Однако при диагностике болезней рыб аквариумисты используют, как правило, два метода исследований: метод клинического осмотра рыбы и менее распространенный — метод гидрохимических исследований. Причем аквариумную воду исследуют в основном на два показателя: концентрацию водородных ионов (рН) и жесткость. Исключение составляют государственные рыборазводни системы Зоокомбината и Министерства рыбного хозяйства СССР, которых обслуживают городские ветеринарные лаборатории, имеющие в штате ветеринарных врачей по болезням рыб, способных провести весь комплекс лабораторно-диагностических исследований.

В ихтиопатологии диагностика болезней аквариумных рыб заключается в проведении целого ряда исследований, из которых одни считаются основными и обязательными (минимум), другие — дополнительными, помогающими установлению правильного диагноза в спорных случаях. К основным методам лабораторно-диагностических исследований относят клинический осмотр, па-тологоапатомические, паразитологические, микробиологические, биологические (биопробы) и гидрохимические исследования. Гидрохимические исследования описаны в разделе «Нарушение газового и солевого состава воды».

Дополнительные диагностические исследования включают следующие методы: вирусологические, гистологические, гематологические, биохимические и химико-токсикологические. Эти методы из-за сложности и продолжительности их проведения используют в основном в научно-исследовательских институтах. В ветеринарных лабораториях к ним прибегают в редких случаях, когда постановка диагноза требует обязательного их проведения.
КЛИНИЧЕСКИЙ ОСМОТР

Если в прудовых хозяйствах и естественных водоемах рыбное стадо постоянно скрыто от глаз наблюдателя, а врач-ихтиопатолог, рыбовод и ихтиолог чаще всего встречаются со значительными отклонениями от нормы в поведении рыб (признаки асфиксии, подход рыбы к притоку, движение ее в зимовальных прудах, плавание на боку или вверх брюхом и т. д.), то рыбоводы-селекционеры и любители-аквариумисты имеют исключительно благоприятные условия для постоянного наблюдения за поведением и физиологическим состоянием своих питомцев — экзотических рыб.

Любая болезнь гораздо легче поддается лечению в начальной стадии. Поэтому своевременно замеченные малейшие отклонения от нормального физиологического состояния рыбы, незначительные изменения внешних покровов ее тела в значительной мере способствуют ранней диагностике заболевания. Благодаря этому удается выявить и изолировать больных рыб и тем самым предупредить распространение заразной болезни и возможность гибели всего населения аквариума.

С целью выявления больных рыб каждый рыбовод-селекционер и аквариумист должен ежедневно тщательно осматривать всех рыб, содержащихся в аквариумах.

Характерными признаками заболевания являются: отказ рыбы от корма, побледпепие окраски тела, отделение стайных рыб от стаи, нарушение координации движений, учащенное жаберное дыхание, потеря реакции на внешние раздражители (приближение сачка и других предметов). Рыбы, ведущие придонный образ жизни, плавают у поверхности воды или, наоборот, держатся в углах аквариума, принимая при этом вертикальное положение (головой вниз или вверх), или совершают круговые движения. Иногда рыбы проявляют беспокойство, выражающееся в почесывании о грунт, водные растения и другие предметы, расположенные в аквариуме. Это свидетельствует о наличии эктопаразитов на поверхности их тела и жабрах. Змеевидное покачивание всем телом указывает на заболевания, причиной которых являются низкая температура воды или эктопаразиты.

Рыб, у которых выявлены описанные выше отклонения, отлавливают из общего аквариума и помещают в отдельный сосуд-изолятор, продолжая наблюдение за ними. Часть из них отправляют на исследование в ветеринарную лабораторию.

Поступившую на исследование в лабораторию живую рыбу немедленно осматривают, предварительно определив ее вид, возраст, пол и размер (по возрасту и размеру можно судить о ее физиологическом развитии). Осматривают кожный покров, плавники, по возможности ротовую полость, обращая внимание на пигментацию, различного рода наложения, гиперемию, кровоизлияния, некрозы, абсцессы, язвы, рубцы, орошение чешуи, асцит, состояние анального отверстия и т. д.

Изменения в пигментации поверхности тела рыб бывают при авитаминозах и других нарушениях обмена веществ, а также при некоторых инфекционных заболеваниях.

При некоторых заболеваниях (хилодонеллезе, костиозе, триходинозе, гиродактилезе) на кожном покрове рыб появляется слизистый беловато-матовый налет, иногда с голубоватым оттенком, состоящий из слизи и эпителиальных клеток. Такие же изменения обнаруживают при простуде и воздействии на кожу раздражающих веществ, растворенных в воде.

Серовато-белые округлые или плоские наросты на кожном покрове и плавниках наблюдают при лимфоцистозе.

При ихтиофтириозе, оодиниумозе, узелковой и других болезнях на поверхности тела рыб образуются различного цвета бугорки, содержащие внутри инфузорий, жгутиконосцев или споровиков и их споры.

Дерматомикоз сопровождается образованием на различных частях тела рыбы ватообразного налета беловатого или сероватого цвета.

Покраснение и геморрагическое воспаление кожного покрова и плавников наблюдается при некоторых инфекционных болезнях, при воздействии растворенных в воде раздражающих веществ, при укусах ихтиофагов (водяных жуков и их личинок, водяных клопов) и эктопаразитов (пиявок, рачков аргулусов, лерпий), при ушибах, ранениях (травмах) во время пересадок и перевозок рыб.

Некротический распад межлучевых перепонок плавников бывает при инфекционной гнили плавников, оодиниумозе, ихтиофтириозе, ихтиоспоридиозе и гиродактилезе. Разрушение чешуи и жаберных крышек возникает при лернеозе и нарушениях обмена веществ.

Абсцессы, язвы, рубцы на теле рыб наблюдаются при микобактериозе, ихтиоспоридиозе, язвенной болезни, а также в результате внедрения и развития секундарной инфекции на месте травм и ранений, нанесенных ихтиофагами и эктопаразитами.

Такие признаки, как ерошение чешуи, экзофтальмия (пучеглазие) и брюшная водянка, одновременно или по отдельности встречаются при микобактериозе, ихтиоспоридиозе, почечной форме сангвиниколеза.

Побледнение жабр, чередование ярко-красных и белых участков, различного рода наложения, кровоизлияния, слипание и срастание жаберных лепестков наблюдаются при бранхиомикозе, ихтиофтириозе, костиозе, жаберной форме сангвиниколеза, дактилогирозах, а также при воздействии различных растворенных в воде раздражающих химических веществ и токсинов.

При осмотре глаз можно обнаружить увеличение и покраснение глазного яблока, выпячивание его из орбиты (экзофтальмия), помутнение хрусталика и роговицы. Эти признаки весьма характерны для заболевания рыб диплостоматозом, микобактериозом и ихтиоспоридиозом.

Установление диагноза по одним только клиническим признакам болезни недопустимо. Для этого необходимо провести один или несколько исследований, описанных ниже. Исключение составляют ихтиофтириоз, оодиниумоз, дерматомикоз, а также механические повреждения, нанесенные рыбе самим исследователем.

Диагностика этих заболеваний по одним клиническим признакам доступна только врачам-ихтиопатологам, рыбоводам-селекционерам и аквариумистам с большим стажем работы с экзотическими рыбами.
ПАТОЛОГОАНАТОМИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Патологоанатомическое исследование начинают с осмотра брюшной полости, обращая внимание на ее содержимое, положение и внешний вид органов.

В брюшной полости при патологических процессах часто можно обнаружить жидкости различного происхождения (транссудат, экссудат и др.) и газы. Жидкость характеризуют в отношении количества, цвета, прозрачности (прозрачная или мутная, хлопьевидная), консистенции, различных примесей и запаха.

После окончания исследования содержимого брюшной полости необходимо получить представление о положении органов и о их виде. Обращают внимание на состояние брюшины, которая в норме должна быть гладкой, блестящей. При патологических процессах в ней можно обнаружить общее или местное изменение окраски, кровоизлияния, различные наложения (фибрин, гном и др.), паразитарные бугорки, туберкулы. При осмотре и извлечении органов можно найти спайки или сращения.

Печень. Осмотром устанавливают ее форму и величину, цвет, консистенцию (плотная, мягкая, дряблая), гиперемию или анемию, кровоизлияния, наличие туберкул и цист.

Желчный пузырь. Определяют степень его наполнения, характер желчи (цвет, консистенцию, прозрачность), состояние внутренней оболочки.

Селезенка. Отмечают ее величину, форму, консистенцию (плотная, мягкая, дряблая), цвет, наличие на ней наложений, рубцов. После внешнего осмотра селезенку разрезают и определяют состояние пульпы, ее цвет, наличие некротических участков, кровоизлияний, гнойных и творожистых очагов.

Желудочно-кишечный тракт. Освобождают от печени и жира брюшную полость и вскрывают желудочно-кишечный тракт ножницами. При этом обращают внимание на ширину просвета, количество и характер содержимого различных отделов (консистенцию, цвет, запах, наличие паразитов). Затем кишечник промывают в воде и детально осматривают слизистую оболочку (цвет, отмечают набухание, отечность, истончение, кровоизлияния, наложения, язвы, рубцы, перфорации).

Гонады. Определяют форму, цвет, консистенцию, стадию зрелости.

Плавательный пузырь. Отмечают форму, величину, состояние оболочек, наличие кровоизлияний и характер содержимого (количество, цвет, прозрачность, консистенция).

Почки. Обращают внимание на форму, вид поверхности, состояние капсулы, консистенцию, степень кровенаполнения, равномерность или пятнистость окраски.

Сердце. Сердце у рыб заключено в сердечную сорочку и отделено от органов брюшной полости соединительпотканной перегородкой. Исследование сердца начинают со вскрытия сердечной сорочки, обращая внимание на цвет, прозрачность, количество, консистенцию заключенной в полости жидкости и состояние серозного листка сорочки (цвет, прозрачность, наличие спаек или сращений). По окончании осмотра полости сердечной сорочки переходят к сердцу, отмечают его размеры, форму, степень наполнения полостей, консистенцию сердечной мышцы. После внешнего осмотра вскрывают полость сердца и отмечают количество и характер содержимого (жидкая кровь, сгустки).

Головной мозг. Вскрывают черепную коробку, удаляют жир, расположенный между костями черепа и головным мозгом, и приступают к исследованию. Обращают внимание на состояние оболочек головного мозга (гиперемия, кровоизлияния) и консистенцию мозгового вещества.

Результаты исследований регистрируют в соответствующем журнале. При обнаружении в отдельных органах и тканях отклонений от нормы подробно описывают увиденную патолого-анатомическую картину.

ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Паразитологическому исследованию необходимо подвергать живых или свежеуснувших рыб всех возрастных категорий.

Рыб вскрывают по методу, разработанному К. И. Скрябиным и модифицированному применительно к рыбам В. А. Догелем и Э. М. Ляймапом. (Техника вскрытия рыбы описана в разделе «Микробиологические методы исследования».)

Органы и ткани рыб исследуют в следующем порядке: кожа, плавники, ротовая полость, жабры, глаза, кровь, сердце, брюшная полость, печень, мочевой пузырь, половые органы, кишечник, мышцы, головной и спинной мозг.

Результаты исследования вносят в рабочий журнал, где указывают дату исследования, пол, возраст, длину рыбы, результаты паразитологического исследования с предварительным и окончательным определением вида паразитов.

Внешний покров. При наружном осмотре кожного покрова и плавников собирают, предварительно определяют и фиксируют для последующего изучения всех паразитов, видимых простым глазом (паразитические ракообразные, пиявки и др.). После этого приступают к микроскопии мазков из соскобов со всей поверхности тела или из нескольких участков (крупные рыбы). Скальпелем соскабливают слизь с кожного покрова и плавников, помещают ее на предметное стекло и смешивают с ранее нанесенными туда же 2—3 каплями прокипяченной и остуженной воды. Накрывают покровным стеклом и рассматривают сначала под лупой, а потом при малом увеличении микроскопа. Исследование рыб па возбудителя костиоза ведут при среднем и большом увеличении микроскопа. Кроме возбудителя костиоза, на коже рыб паразитируют другие жгутиконосцы, а также инфузории, моногенетические сосальщики, паразитические рачки. Весьма часто на них можно обнаружить споровиков, локализующихся в дермальных бугорках.

Крупных паразитов (рачков, гельминтов) подсчитывают в абсолютных числах, а мелких (споровиков, инфузорий и других простейших) — в относительных, то есть подсчитывают число паразитов в десяти полях зрения микроскопа и определяют средние показатели. При этом высчитывают по каждому паразиту в отдельности экстенсивность и интенсивность инвазии для каждого вида и возраста рыб.

В случае затруднения видового определения тех или иных паразитов их необходимо консервировать в соответствующих жидкостях и сохранять для дальнейшей камеральной обработки. На склянку обязательно наклеивают этикетку.

Жабры. Все жаберные дуги вынимают, помещают на предметное стекло, собирают всех видимых паразитов, их подсчитывают и фиксируют.

Соскоб с жаберных лепестков или целые жаберные дуги с несколькими каплями воды зажимают между двумя предметными стеклами так, чтобы они стали прозрачными, и исследуют при малом увеличении микроскопа.

Споровики, некоторые инфузории и личинки сосальщиков могут находиться не на поверхности жаберных лепестков, а в, особых соединительнотканных образованиях (бугорках); обнаружить и извлечь их можно только после разрыва стенки бугорка при помощи препаровальных игл. В кровеносных сосудах жабр могут находиться яйца сангвиникол, споры и мицелии гриба.

Глаза. Для обнаружения паразитов глаза извлекают из глазных впадин, помещают на предметное стекло и вскрывают острыми ножницами с внутренней каудальной стороны. Извлеченное стекловидное тело, хрусталик и содержимое передней камеры глаза компрессируют между двумя предметными стеклами и просматривают при малом увеличении микроскопа. В глазах можно обнаружить личинки сосальщиков рода Diplostomulum.

Кровь. Каплю крови наносят на обезжиренное предметное стекло, вносят для предотвращения свертывания немного 1%-ного раствора лимоннокислого натрия, покрывают покровным стеклом и исследуют под микроскопом. Для предотвращения высыхания крови края покровного стекла обмазывают вазелином. Одновременно несколько мазков крови высушивают на воздухе, фиксируют в метиловом спирте, окрашивают по Романовскому — Гимза или гематоксилином и также исследуют под микроскопом.

Брюшная полость. Брюшную полость вскрывают по методике, изложенной в разделе «Микробиологические методы исследования», с той только разницей, что при паразитологнческом исследовании нет необходимости соблюдать условия стерильности. Дугообразный разрез к основанию левого грудного плавника начинают от анального отверстия, вводя непосредственно в него тупой конец одной из бранш ножниц. Вскрытую брюшную полость осматривают, а имеющиеся на серозных покровах и брыжейке бугорки исследуют под микроскопом.

Сердце. Для исследования сердце помещают в бактериологическую чашку с физиологическим раствором, вскрывают его полости, промывают и образовавшийся осадок исследуют под микроскопом на наличие возбудителя сапгвиниколеза.

Печень. Чтобы обнаружить паразитов, обитающих в печени, ее делят на небольшие кусочки, которые компрессируют и исследуют под лупой и затем при слабом увеличении микроскопа.

Желчный пузырь. Для обнаружения паразитов желчный пузырь вырезают, помещают'на предметное стекло, разрезают ножницами, делают соскоб с внутренней оболочки стенки пузыря. Соскоб и сам желчный пузырь помещают между двумя предметными стеклами и исследуют под лупой и микроскопом. В желчном пузыре можно обнаружить простейших и сосальщиков.

Селезенка. Селезенку помещают между двумя стеклами, сжимают до прозрачности и исследуют под микроскопом.

Почки. Для обнаружения паразитов почки компрессируют и исследуют под микроскопом. В почках можно найти споровиков и яйца сосальщиков.

Плавательный пузырь. В случае необходимости соскоб с внут ренней оболочки плавательного пузыря можно исследовать под микроскопом компрессорным методом.

Мочевой пузырь. Методика исследования сходна с исследованием желчного пузыря. В мочевом пузыре можно обнаружить сосальщиков, споровиков и инфузорий.

Половые органы. Для обнаружения паразитов железу по частям компрессируют между стеклами и просматривают под микроскопом.

В половых органах встречаются микроспоридии.

Желудочно-кишечный тракт. Пищевод, желудок и кишечник извлекают, освобождают от жира и печени, расправляют и вскрывают ножницами, начиная с пищевода. По ходу вскрытия обнаруженных крупных паразитов (ленточных и круглых червей, сосальщиков) извлекают и помещают в физиологический раствор. Содержимое из различных отделов желудочно-кишечного тракта исследуют компрессорным методом под микроскопом. Затем с помощью скальпеля делают глубокий соскоб со слизистой оболочки из нескольких мест и исследуют на наличие микроскопических паразитов (октомитус).

Мышцы. Чтобы обнаружить мелких паразитов, берут небольшие кусочки мышц из различных частей тела и исследуют компрессорным методом под лупой и под микроскопом при малом увеличении. В мышцах можно обнаружить споровика плистофору и его споры.

Головной и спинной мозг исследуют компрессорным методом. В этих органах можно обнаружить споровиков.

Методы окраски. Мазки крови па наличие кровепаразитов окрашивают азур-эозином по Романовскому — Гимза (0,8 г азура II, 3 г эозина, 250 мл химически чистого глицерина и 250 мл метилового спирта) или метилеповой синью по Машковскому (1 г метиленовой сини и 2,5 г буры растворяют в 100 мл горячей воды).

Готовую, имеющуюся в продаже краску Романовского перед окрашиванием разводят из расчета 2—3 капли на 1 мл нейтральной дистиллированной воды. Если готовая краска отсутствует, ее можно приготовить самим. Для этой цели 1 г азура II растворяют в 1 л прокипяченной дистиллированной воды (раствор № 1) и 1 г эозина — в 1 л воды (раствор № 2). Оба раствора хранят отдельно. Перед употреблением на 1 мл нейтральной дистиллированной воды прибавляют по две капли каждого раствора. Продолжительность окраски 20—40 минут. Эритроциты окрашиваются в красный или розовый цвет, протоплазма паразитов и лейкоцитов — в синий, ядра паразитов — в красный, а лейкоцитов — в фиолетовый.

Раствор метиленовой сини перед употреблением разводят дистиллированной водой 1:10 и окрашивают мазки в течение 30 секунд, затем промывают водой и дифференцируют в течение нескольких секунд 5—10%-ным водным раствором танина. Эритроциты получаются красновато-фиолетовые, протоплазма простейших кровепаразитов — ярко-голубая, ядра лейкоцитов — фиолетовые.

Для изучения морфологии паразитических инфузорий применяют окраску железным гематоксилином по Гейденгайну (протрава 2—2,5%-ным раствором сернокислых железо-аммиачных квасцов — 1—2 часа, окраска их 1%-ным спиртовым раствором гематоксилина в течение нескольких часов и дифференциация 1%-ным раствором 5—10 минут). Окрашивать инфузории можно также гематоксилином Делафильда или квасцовым кармином.

Паразитических жгутиконосцев окрашивают железным гематокслином или по Романовскому — Гимза.

Слизистых споровиков окрашивают 1%-ным водным раствором метиленовой сини 30—60 минут, затем препарат промывают в воде, последовательно проводят через спирты возрастающей крепости (70, 80, 96°-ный и абсолютный) и просветляют ксилолом.

Трематод и цестод окрашивают квасцовым кармином. Фиксированные в спирте препараты промывают в течение нескольких часов в проточной или часто сменяемой воде, затем помещают в краску (от 1 минуты до нескольких часов в зависимости от толщины гельминта). Продолжительность окраски можно контролировать, исследуя препараты под микроскопом. Окрашенные препараты переносят в дистиллированную воду, где в течение нескольких минут тщательно промывают от краски. Отмытых от краски паразитов осторожно сушат фильтровальной бумагой и проводят через спирты возрастающей крепости (70, 80, 96°-ный), выдерживая в них несколько часов. Обезвоженных паразитов просветляют гвоздичным маслом и ксилолом.

Цестод, так же как и трематод, можно окрашивать геыатеи-ном Майера (1 г гематеина растворяют в 1 л дистиллированной воды с последующим добавлением 0,2 г йодноватокислого натрия и 50 г калийных квасцов). Гематеин допускает как прогрессивное, так и регрессивное окрашивание (без дифференцировки или с ней). При прогрессивном способе красят только 30 минут, при регрессивном—в течение 24 часов. Во втором случае для дифференциации препарат обрабатывают в 1%-ном солянокислом спирте под контролем микроскопа с последующим тщательным отмыванием краски в проточной воде в течение 20—30 минут.

Хорошие результаты получают при окраске мелких цестод молочнокислым кармином по Блажину. Молочную кислоту разводят вдвое дистиллированной водой, добавляют в нее небольшое количество кармина (в зависимости от желаемой степени окраски) и жидкость кипятят. Красить лучше свежие, нефиксированные объекты. Продолжительность окраски контролируют под микроскопом, а в случае перекрашивания объект переносят в цельную молочную кислоту для обесцвечивания. Окрашенный препарат промывают в течение 20—60 минут водопроводной водой и помещают в бальзам.

Для окраски крупных цестод этот способ модифицирован. Цестод в течение суток промывают в проточной или часто сменяемой водопроводной воде при комнатной температуре. Затем гельминтов помещают на 4—6 часов в краску (0,3 г кармина на 100 мл 30%-ной молочной кислоты), контролируя интенсивность перекрашивания под микроскопом, после чего на сутки их переносят в дистиллированную воду с добавлением в нее трех капель раствора сернокислого железа и двух капель 1%-ного раствора карболовой кислоты. В дальнейшем цестод переносят на чистое большое стекло, расправляют на нем и высушивают при температуре 30—37° (не выше, иначе препарат сморщится). Высохший, очень плотно приставший к стеклу препарат заливают канадским бальзамом или канифолью, растворенной в смеси, состоящей из равных частей хлороформа и абсолютного спирта.

Паразитических рачков исследуют в той же жидкости, в которой они хранятся. Красить их не обязательно. Иногда прибегают к окраске борным кармином, эозином, сафранином.

Идентификацию паразитов производят по «Определителю паразитов пресноводных рыб СССР» (издательство АН СССР, 1962) или по схеме, приведенной в руководстве Э. М. Ляймана «Болезни рыб» (Сельхозиздат, 1963).
Глава IV. ЛЕЧЕНИЕ БОЛЬНЫХ РЫБ (Внимание! Информация в данном разделе существенно устарела, сейчас появилось много новых высокоэффективных средств, а потому к ней стоит относится с некоторой критичностью и поправкой на срок давности)
Борьба с незаразными болезнями аквариумных рыб сводится к установлению определенного температурного и гидрохимического режима для каждого вида и возраста рыб, организации правильного кормления, поддержанию соответствующего санитарного состояния в аквариумах и т.д. Исключение составляют киста, ожирение внутренних органов рыб и сколиоз, которые практически неизлечимы. О профилактике этих болезней необходимо заботиться в первую очередь.

Гораздо сложнее бороться с заразными болезнями, причинами которых являются паразиты растительного (инфекционные болезни) и животного (инвазионные болезни) происхождения.

Для целого ряда болезней, возбудителями которых являются эндопаразиты, т. е. локализующиеся во внутренних органах и тканях, методы лечения до настоящего времени не разработаны. К ним относятся: микобактериоз, лепидортоз, димфоцистоз, па-пилеммы, язвенная болезнь, ихтиоспоридиоз, бранхиомикоз, плистофороз, глюгеоз, узелковая болезнь, октомитоз, сангвини-колез, диплостоматоз и кариофиллез.

При паразитарных заболеваниях аквариумных рыб, возбудителями которых являются эктопаразиты, локализующиеся на поверхности кожного покрова и жабр рыб, разработанные методы лечения дают положительные результаты.

В аквариумном рыбоводстве лечение больных рыб осуществляется в основном тремя способами: 1) в общем аквариуме; 2) в отдельном сосуде; 3) индивидуально—лечебными примочками.

Наиболее распространенным и эффективном является лечение в отдельном сосуде. В этом случае при непродолжительном курсе лечения на возбудителя болезни губительно действует лечебный раствор высокой концентрации. Значительным неудобством при этом являются некоторая трудоемкость, связанная с. выловом всего или частичного количества рыб из аквариума, многократное приготовление лечебных растворов, обязательное наличие нескольких сосудов для передержки в них больных рыб и проведения их через лечебные растворы, выделение отдельного рыбоводного инвентаря, его дезинфекция и т. д.

Лечение больных рыб в общем аквариуме связано с меньшими трудностями, но оно не всегда дает 100 %-ное освобождение рыбы от заразного начала. Это объясняется прежде всего относительно низкими концентрациями лечебных растворов, которые не убивают полностью возбудителей болезней, особенно их покоящиеся стадии. Увеличение же концентрации лечебных растворов приводит к гибели водной растительности. Целый ряд возбудителей болезней при этом методе лечения способны долгое время сохраняться в грунте и воде.

Поэтому при лечении рыб в общем аквариуме приходится часто наблюдать затухание болезни, когда рыба с ярко выраженной ранее клиникой болезни внешне становится совершенно здоровой, а через некоторое время признаки болезни появляются вновь.

В тех случаях, когда в аквариуме выявлены единичные экземпляры рыб, пораженные одним из видов паразитов, такими, как ихтиофтириусы, хилодонеллы, костии, оодиниумы, триходины, гиродактилусы и дактилогирусы, способных вызвать массовое заболевание и гибель рыб, необходимо провести лечение всего населения аквариума.

Часто методы лечения нескольких болезней являются одинаковыми. Так, например, в аквариум-изолятор были помещены подозреваемые в заболевании рыбы нескольких видов. В результате постоянного наблюдения за клиническим течением болезни и лабораторно-диагностических исследований было установлено, что все они больны оодиниумозом, костиозом и дактилогирозом, т. е. возбудители болезни — эктопаразиты. В этом случае лечению подлежат все рыбы, содержащиеся и в общем аквариуме. Лечение можно провести как в отдельном сосуде, так и в общем аквариуме.

Применение лечебных примочек в аквариумной практике менее распространено, хотя дает положительные результаты.

Целый ряд медикаментозных препаратов, предложенных в свое время авторами многих книг по аквариумному рыбоводству, в настоящей книге не упомянут вообще или рекомендован для лечения всего лишь нескольких болезней рыб. Это объясняется тем, что:

1) производство некоторых препаратов прекращено, так как они заменены новыми, более эффективными. Однако методы борьбы с болезнями экзотических рыб при помощи новых препаратов еще не разработаны. К таким препаратам относятся: атебрин, акварол, колларгол и др.;

2) эффективность ряда препаратов незначительна. Например, такие препараты, как поваренная и искусственная морская соль, а также трипафлавин; далеко не полностью освобождают рыб от паразитов, а лишь сокращают их численность. Оставшиеся на рыбах паразиты активно размножаются и снова вызывают заболевание. Положительные результаты эти лечебные вещества дают только при борьбе с триходинозом и костиозом.

Обязательными условиями при любом методе лечения рыб является точное составление концентрации лечебных растворов, соблюдение экспозиций и курса лечения, последовательности пересадки рыб из одного сосуда в другой, а также поддержание рекомендуемых температурных режимов и рН воды. Только в случае соблюдения этих условий лечение больных рыб дает положительные результаты.
ЛЕЧЕНИЕ В ОБЩЕМ АКВАРИУМЕ

Применение лечебных растворов в общем аквариуме преследует две цели: освобождение организма рыбы от заразного начала путем воздействия на него лечебным препаратом и сохранение водной растительности, находящейся в аквариуме в период лечения рыб. Концентрация лечебного раствора не должна быть токсичной для рыб и растений. На протяжения всего курса лечения больных рыб, грунт и водную растительность оставляют в общем аквариуме. Продолжительность лечения зависит от биологических особенностей возбудителя болезни, места его локализации, степени поражения рыбы и ее состояния. Обычно лечейие проводится до полного излечения рыб и длится от шести суток до месяца, а иногда и дольше.

Методика приготовления лечебного раствора. В склянке (стакане, колбе) емкостью 200—:250мл тщательно растворяют определенное количество лекарственного препарата, строго рассчитанное на весь объем воды аквариума. Затем концентрированный раствор из склянки постепенно равными порциями в три приема с интервалами 20—30 минут переливают в аквариум, осторожно перемешивая при этом воду. Для более быстрого и равномерного перемешивания раствора после его внесения в аквариум можно временно (на 20—-30 минут) включить аэрационную установку. Переливать сразу весь лечебный раствор в воду аквариума недопустимо.

Во всех случаях пользуются только свежеприготовленными растворами.

Лечебный раствор поваренной соли (NaCl) для всего объема воды аквариума, где будет проводиться лечение больных рыб, готовят из расчета одна полная столовая ложка поваренной соли на 10 л воды. Температуру воды ваквариумеможно в течение 2—3 дней поднять до 30— 32° с одновременной аэрацией ее. Лечение длится в среднем 10—30 дней. По окончании лечения воду в аквариуме в 2—3 приема заменяют свежей.

Лечебный раствор искусственной морской воды в общем аквариуме, где содержатся больные рыбы и где будет проводиться их лечение, составляют из расчета 100—150 мл (0,5—0,75 стакана) морской воды на 10 л аквариумной воды.

Для приготовления искусственной морской воды в расчете на 10 л воды берут 277 г хлористого натрия, 69 г сернокислого магния, 55 г хлористого магния, 7 г хлористого калия, 3 г двууглекислого натрия, 1 г азотнокислого натрия, 1 г бромистого натрия, 0,5 г двузамещенного фосфорнокислого натрия, 0,05 г йодистого калия, 0,15 г хлористого стронция и отдельно в небольшом количестве воды растворяют 15 г кристаллического хлористого кальция и добавляют его к общему раствору.

Растворы поваренной и морской соли применяют для лечения костиоза и триходиноза.

Для лечения молоди и ослабевшей рыбы применяют менее концентрированные растворы.

Лечебный раствор трипафлавина. Трипафлавин — синтетический краситель оранжево-красного или буровато-красного цвета, хорошо растворимый в воде. Применяют его в дозах 0,6—1 г на 100 л воды. Рассчитанную на данный об?ем аквариума дозу трипафлавина растворяют в 200 мл воды и постепенно, равномерно перемешивая, переливают в аквариум с больными рыбами. Вода при этом приобретает желто-зеленый оттенок, который к концу лечения (примерно на 14-е сутки) почти полностью исчезает. Одновременно в аквариуме повышают температуру воды до 30— 32° и поддерживают ее на таком уровне до конца курса лечения. При повышении температуры необходимо наладить интенсивную аэрацию воды. Фильтры выключают, поскольку они будут способствовать улетучиванию из воды лечебного препарата. Если рыбы проявляют признаки асфиксии, аэрацию воды увеличивают, а температуру воды снижают до 28--300.

Описанный метод лечения больных рыб трипафлавином в общем аквариуме дает положительные результаты только при костиозе и триходинозе. Частично освобождает рыб от оодиниу-мов, ихтиофтириусов, хилодонелл, гиродактилусов и дактило-гирусов. Лечебный раствор трипафлавина профилактически действует при некоторых вирусных и бактериальных инфекциях. Для борьбы с грибковыми заболеваниями рыб Трипафлавин непригоден ввиду его незначительной эффективности.

Лечебный раствор метиленовой сини. Метиленовая синь также является синтетическим красителем синего цвета. Препарат применяют в виде 1%-ного раствора, который растворяют в общем аквариуме с больными рыбами из расчета 3 мл на 10 л свежей аквариумной воды. Вода при этом приобретает синий цвет, что затрудняет наблюдение за рыбами. Для освобождения воды от ярко-синего окрашивания по окончании курса лечения применяют фильтры с активированным углем. Продолжительность лечения до одного месяца.

Лечебные растворы метиленовой сини применяют для борьбы с костиозом и триходинозом. Препарат частично действует и на других эктопаразитов.

Лечебный раствор сульфата меди. Сульфат меди, или медный купорос, является сильным ядом для всех гидробионтов и растительности аквариума. В связи с этим при его применении следует соблюдать точную дозировку. Применять технический медный купорос, продаваемый в хозяйственных магазинах, не рекомендуется.

Для приготовления маточного раствора 1 г химически чистого или чистого для анализа сульфата меди растворяют в 1 л воды. Таким образом получают 0,1%-ный раствор сульфата меди. Затем 15 мл его разводят в 10 л аквариумной воды. Температуру воды в аквариуме не повышают. Лечение длится не более 10 дней. Путем постепенной смены воды по частям лечебный раствор в аквариуме заменяют свежей водой. Лечебный раствор сульфата меди дает положительные результаты в борьбе с плавниковой гнилью, грибковыми и всеми эктопаразитарными болезнями рыб.

Лечебный раствор бициллина-5 (Временное наставление по применению бициллина-5 для лечебной и профилактической обработки аквариумных рыб и растительности, утвержденное Глав-ветупром МСХ СССР 30 июня 1974 г.) Бициллин-5 (NN-дибензил-этилендиаминовая соль бензилпенициллина) — белый порошок без запаха и вкуса, плохо растворимый в воде (0,32 мг/ мл при 28°С). Препарат малотоксичен, не обладает кумулятивными свойствами, С водой образует гомогенную суспензию, проявляя наиболее активное действие в первые 2 часа после разведения. На ярком свету в воде быстро разлагается.

Ежедневно в течение шести суток в аквариум с больными рыбами вносят раствор бициллина-5 из расчета 500 000 БД 1/3 содержимого флакона) на 100 л воды. Жесткость и рН воды значения не имеют. В склянке емкостью 200—250 мл быстро, но тщательно разводят необходимое на данный объем аквариума количество бициллина-5 и тут же вносят в аквариум с больными рыбами. Температура воды в склянке при разведении антибиотика должна быть 28°.

За сутки до начала курса лечения в аквариуме налаживают температурный режим воды в пределах 24—26°, который поддерживают на аадаяном уровне до окончания лечения. Указанная температура воды способствует быстрому росту и процессу размножения наиболее опасных паразитов рыб, что обусловливает их выход из эпителиальных бугорков кожного покрова и покоящихся стадий (цист) в воду, содержащую токсические для них дозы бициллина-5. Так, оптимальными температурами для развития ихтифтириусов являются 24—26°, для оодиниумов пиллуларис 23—25°, для костий 25—28°, для дактилогирусов вастатор 25°.

К тому же температура воды 24—26° наиболее благоприятна для содержания большинства аквариумных рыб. Для холодолюбивых рыб (род Сагаssius и др.) необходимо проводить аэрацию воды. Для остальных видов рыб аэрацию воды проводят в зависимости от плотности посадки рыбы и количества в аквариуме водной растительности.

Лечебный раствор антибиотика лучше вносить в аквариум на ночь. При внесении его днем аквариум затеняют на 2 часа. Ежедневно используют только свежеприготовленный раствор.

Лечение всех без исключения аквариумных рыб бициллином-5 можно начинать с 2-месячного возраста их, не опасаясь случаев отравления. Во время лечения рыб кормят только живыми ракообразными, мотылем, трубочником и коретрой. Дают корм не ранее чем через 2 часа после внесения в аквариум лечебного раствора антибиотика.

Описанный метод лечения полностью освобождает рыб от возбудителей оодиниумоза, ихтиофтириоза, триходиноза, кости-оза, хилодонеллеза, дактилогироза, гиродактилеза, плавниковой гнили. Способствует заживлению язв при микобактериозе, ихтио-спорждиозе и язвенной болезни, но не излечивает рыб от трех побледних болезней.

Комбинированный лечебный раствор малахитового зеленого и сульфата меди. 10 мг (технического) кристаллического малахитового зеленого (оксалата) и 15 мл 0,1%-него раствора сульфата меди (CuSO4 • 5H2O) разводят в 100 л аквариумной воды. Температуру воды повышают до 28° и поддерживают на заданном уровне до окончания курса лечения при рН 5,5—6,8. Первоначальные дозы медикаментозных препаратов вносят в аквариумную воду через каждые 7—10 дней. Курс лечения длится до месяца и больше.

Данный комбинированный лечебный раствор применяют при болезнях рыб, возбудителями которых являются многие эктопаразиты.

Лечебный раствор биомицина. Биомицин - антибиотик. Это кристаллический порошок золотисто-желтого цвета, малотоксичен, относительно хорошо растворим в воде. Его синоним - гидрохлорид хлортетрациклина. Дозы: 1,3—1,5 г на 100 л воды. Температуру воды в аквариуме не повышают, фильтры не отключают. Продолжительность лечения от 10 дней до одного месяца. Через каждые 7 дней в воду аквариума добавляют первоначальную дозу биомицина. По окончании курса лечения воду в аквариуме не меняют.

Свое лечебное действие препарат оказывает при болезнях инфекционного происхождения, а также при лечении механических повреждений наружных покровов рыб.

Лечебный раствор белого стрептоцида. Белый стрептоцид — порошок белого цвета с желтым оттенком. В воде дает нейтральную реакцию. Это — малотоксичный сульфаниламидный препарат. Для приготовления лечебного раствора берут стрептоцид из расчета 10—20 г на 100 л воды. Применяют с той же целью и в том же порядке, что и раствор биомицина.

Лечебный раствор риванола. Риванол—желтый мелкокристаллический порошок горького вкуса, без запаха. Относительно хорошо растворим в воде. С повышением температуры воды растворимость его повышается. Доза — 0,2 г на 100л воды. Температуру воды в аквариуме не повышают, фильтры не отключают. Курс лечения составляет 14—16 дней, после чего воду в аквариуме заменяют свежей путем трехкратного добавления последней.

Лечебный раствор риванола применяют при борьбе с эктопаразитарными болезнями рыб.
ЛЕЧЕНИЕ В ОТДЕЛЬНОМ СОСУДЕ

Лечение больных рыб в отдельном сосуде основано на воздействии лечебного препарата на возбудителя болезни в максимальной, близкой к токсичной для организма рыбы концентрации. В связи с этим время пребывания рыбы в лечебном растворе (экспозиция) невелико и колеблется от нескольких минут до нескольких дней. Чаще всего курс лечения состоит из ряда сеансов, которые повторяют 1—2 раза в сутки.

За кратковременность пребывания больных рыб в лечебном растворе такое лечение называют лечением рыб в кратковременных ваннах.

Методика проведения кратковременных ванн. Для лечения рыб в кратковременных ваннах обычно используют цельностеклянные сосуды различной формы и емкости. Таких сосудов должно быть три. Аквариумы с металлическим каркасом для этих целей пригодны не во всех случаях..

В склянке емкостью 200—250 мл тщательно разводят применяемый препарат, доза которого строго рассчитана на объем воды первого сосуда, где будет проводиться лечение больных рыб. Далее в этот сосуд со свежей отстоявшейся водой выливают половину концентрированного лечебного раствора, приготовленного в склянке. В два других сосуда наливают свежую, отстоявшуюся воду. Температура во всех трех сосудах должна быть равна температуре воды в аквариуме с больными рыбами. После этого больных рыб из аквариума помещают в первый сосуд с лечебным раствором. В течение 4—5 минут в первый сосуд при равномерном перемешивании воды постепенно переливают из склянки вторую половину концентрированного раствора. Одновременно внимательно наблюдают за состоянием рыб. В случае проявления рыбами признаков беспокойства (резкие скачкообразные движения) или при их переворачивании на бок добавление концентрированного раствора прекращают. При необходимости концентрацию лечебного раствора в первом сосуде снижают путем добавления воды или рыб пересаживают в сосуд со свежей водой.

В другом случае весь концентрированный лечебный раствор, приготовленный в склянке, переливают в первый сосуд и тщательно перемешивают. Учитывая, что концентрация приготовленного лечебного раствора может оказаться токсичной, в первый сосуд помещают несколько наиболее слабых и пораженных рыб (2—3 экземпляра). Если эти рыбы будут вести себя нормально, то можно приступать к обработке всего рыбного стада. В случае, если концентрация лечебного раствора окажется высокой, то ее понижают, добавляя свежую воду.

После окончания сеанса лечения рыб переводят во второй сосуд.

Медикаментозные препараты, применяемые в лечебных дозах, не всегда убивают паразитов, обитающих на кожных покровах и жабрах рыб. Нередко паразиты под действием лекарственных веществ постепенно покидают места локализации и опускаются на дно сосуда, но через некоторое время они снова способны нападать на рыб. Пребывание рыб во втором сосуде и предусматривает процесс покидания паразитами мест своей локализации и опускание их на дно.

Через 30 минут пребывания рыб во втором сосуде их переводят третий, в котором содержат до следующего сеанса лечения.

При пересадке рыб из второго сосуда в третий происходит некоторое механическое очищение их от оглушенных паразитов.

Использованный лечебный раствор из первого сосуда и воду из второго выливают. Лечебный раствор готовят заново перед каждым сеансом лечения. По окончании второго и последующих сеансов лечения воду в третьем сосуде после пересадки рыб в лечебный раствор (в первый сосуд) также заменяют свежей. Такую смену лечебных растворов и воды во всех сосудах производят в описанном порядке до окончания всего курса лечения больных рыб.

Кормят рыб в третьем сосуде, используя при этом наиболее свежие и питательные виды корма. В период нахождения рыб в первом и третьем сосудах проводят аэрацию воды.

Необходимо выделить отдельный сачок и другой рыбоводный инвентарь (кормушки, термометры, распылители и т. д.). По окончании всего курса лечения их обеззараживают кипячением в течение 10 минут. Сачок трижды обрабатывают крутым кипятком после окончания каждого сеанса лечения.

Наиболее широкое применение кратковременные ванны нашли при лечении больных рыб, пораженных простейшими (костия, хилодонелла, ихтиофтириус, оодиниум, триходина), многогенетическими сосальщиками (гидродактилусы и дактилогирусы), ракообразными (аргулусы и лернии), а также пиявками (писциколы). Кроме того, их применяют в борьбе с дерматомикозом. Для лечения инфекционных болезней рыб они в большинстве случаев малоэффективны.

При проведении кратковременных ванн применяют растворы следующих лечебных препаратов.

Перманганат калия (KMnO4) из расчета 0,5 г на 10 л воды, экспозиция 10—20 минут. Рыб многократно проводят через лечебный раствор через каждые 12 часов. Образование на теле рыб пузырьков воздуха во время нахождения их в ванне не опасно.

Трипафлавин из расчета 0,2 г на 10 л воды. Рыб многократно помещают в лечебный раствор на 15—20 минут через каждые 12 часов.

Раствор формалина из расчета 2—2,5 мл 40%-ного раствора на 10 л воды, экспозиция 30—45 минут. Курс лечения длится 3—4 дня с ежедневной обработкой больных рыб в лечебном растворе формалина.

Поваренная соль (NаС1) из расчета 100—150 г на 10 л воды, экспозиция 20 минут. Обработку рыб повторяют через каждые 12, часов в течение нескольких дней.

Бициллин-5 из расчета 1 500 000 ЕД на 10 л воды. Экспозиция 30 минут. Курс лечения длится 6 суток. Ежедневно составляют свежий лечебный раствор антибиотика в указанной концентрации. Во время всего курса лечения температура воды в сосудах, в том числе и лечебного раствора, должна быть 24—26°.

Препарат полностью освобождает рыб от возбудителей ихтиофтириоза, оодиниумоза, триходиноза, костиоза, хилодонеляеза, гиродактилеза, дактилогироза и плавниковой гнили. Способствует заживление язв при микобактериозе, ихтиоспоридиозе и язвенной болезни.

Малахитовый зеленый— синтетический диаминотрифенилметановый краситель. Представляет собой хорошо растворимые в воде кристаллы с металлическим блеском, зеленого или желтого цвета. Препарат обладает высокой токсичностью.

Применяют химически чистый или чистый для анализа малахитовый зеленый. Обработке подлежат только взрослые рыбы следующих видов: гуппи, меченосцы, пепилии, моллиенезии, пляйфери, гурами, петушки, лялиусы, неоновые, кардиналы, фунду-лусы гетероклитусы, барбусы, расборы гетероморфы, нанносто-мусы арапирангские, шубункины и вуалехвосты.

Метод утвержден Главным управлением ветеринарии 16 июля 1973 г. как Временное наставление по применению малахитового зеленого против плавниковой гнили, дерматомикоза и эктопаро-зитарных болезней аквариумных рыб. При разработке его были использованы только половозрелые особи перечисленных выше видов рыб.

К лечению других видов рыб следует относиться очень осторожно.

Больную рыбу подвергают четырехкратной обработке, создавая концентрацию лечебного раствора первые два дня из расчета 0,5 мг, в третий'и четвертый дни — 0,7 мг малахитового зеленого на 1 л воды. Температура воды в сосудах с водой и лечебного раствора должна быть 24—25° при рН, 5,5—6,8.

В лечебном растворе малахитового зеленого рыб выдерживают 5 часов. Ежедневно готовят свежие лечебные растворы. Лечебные растворы и воду в сосудах, где содержатся рыбы в период обработки и между обработками, аэрируют.

Описанный метод весьма эффективен при лечении рыб, больных ихтиофтириозом, оодиниумозом, костиозом, хилодонеллезом, триходинозом, гиродактилезом, дакталогирозом, плавниковой гнилью и дерматомикозом,

Сульфат меди из расчета 1 г химически чистого или чистого для анализа сульфата меди (CuSO4 · 5H2O) на 10 л воды. Технический купорос, продаваемый в хозяйственных магазинах, для лечения рыб непригоден.

Больных рыб выдерживают в лечебном растворе по 10—30 минут ежедневно в течение недели.

Основной фиолетовый К (хлоргидрат). Растворяют 0,1 г препарата в 1 л воды, затем 10—15 мл маточного раствоуа разводят в 10 л воды (рН 6—8). Больных рыб выдерживают в лечебном растворе четверо суток. Препарат оказывает лечебное действие при болезнях рыб, вызываемых эктопаразитами при начальных стадиях дерматомикоза и плавниковой гнили. Следует внимательно/ относиться к рекомендованной концентрации лечебного раствора, так как, по нашим наблюдениям, некоторые виды живородящих рыб после обработки в ваннах основного фиолетового К теряли способность к размножению.

Дозы медикаментозных препаратов при лечении молоди рыб следует сокращать в 1,5—2 раза.

Рекомендации по применению большинства кратковременных ванн для лечения тех или иных болезней даны при описании болезней рыб.
ЛЕЧЕБНО-ПРОФИЛАКТИЧЕСКАЯ УСТАНОВКА “НЕПТУН”

В 1974 г. в Московском клубе аквариумистов “Нептун” при Дворце культуры завода “Серп и Молот” руководитель клуба Ю. И. Дроздов, журналист Ю. И. Орлов, инженеры Д. Н. Степанов и О. И. Шубравый разработали оригинальную установку, которую они назвали “Нептун”.

Установка обеспечивает лечебно-профилактическую обработку пресноводных и морских рыб от многих наружных паразитов, а также возбудителей инфекционных болезней. Одновременно с этим обеззараживанию подвергаются вода, водная растительность, грунт и рыбоводный инвентарь (термометры, кормушки), помещенные в аквариумы.

Установка состоит из шести аквариумов, по 250 л каждый. В пяти из них содержат рыб и водную растительность. Шестой аквариум используют как специальный фильтр.

Водопроводную воду заливают во все аквариумы, где она отстаивается в течение двух-трех суток. К “аквариуму-фильтру” подключен насос, который через антикоррозийные переливные трубки перекачивает воду в последний от аквариума-фильтра аквариум, и отсюда она возвращается обратно.

На дно аквариума-фильтра помещают крупный речной песок слоем 10—15см. В первое время на поверхности песка откладывается детрит, превращающийся позже в активный ил. Последний участвует в биохимических процессах, создающих в воде всех аквариумов биологическое равновесие.

Из компрессора воздух поступает в озонатор, а из него через распылитель в специальный небольшой отсек, установленный в аквариуме-фильтре. В дальнейшем обогащенная озоном и воздухом вода при помощи названного выше насоса поступает в дальний от фильтр а аквариум, из него по системе переливных трубок нападает в остальные аквариумы, а из них возвращается в аквариум-фильтр.

Температура в аквариумах установки поддерживается на уровне 24— 26°.

Не было случая, чтобы в установке “Нептун” появлялись какие-либо заразные болезни рыб. Более того, в аквариумы установки неоднократно помещали заведомо больных ихтиофтириозом и обдиумозом рыб с высокой степенью инвазированности, но через 2—3 дня рыбы полностью освобождались от паразитов.

Если при выращивании рыбы старым способом (без постоянного протока и озонирования воды) плотность посадки молоди была относительно небольшой, то в установке “Нептун” плотность посадки и темп роста рыбы значительно увеличились.

Выпускаемые отечественной промышленностью озонаторы вполне приемлемы для использования в комнатных аквариумах ^любителей. Такие установки перспективны для рыбоводных комплексов, рыбоводных цехов “Зооветобъединения” и Министерства рыбного хозяйства СССР, а также для аквариумов зоопарков и ВДНХ союзных республик. Для последних следует применять более мощные озонаторы, также выпускаемые отечественной промышленностью.

Установка “Нептун” функционирует в павильоне “Рыбное хозяйство” ВДНХ СССР.

ЛЕЧЕБНЫЕ ПРИМОЧКИ

Лечебные примочки применяют в случаях, когда паразиты глубоко внедряются в кожные покровы и прилегающие к ним ткани, а лечение рыб в общем аквариуме и в отдельном сосуде не приносит положительного результата.

Техника проведения примочек. В склянке готовят лечебный раствор. В другую стеклянную посуду наливают аквариумную или свежую отстоявшуюся воду и помещают в нее ватные тампоны, размеры которых должны быть в 2—3 раза боль-'ше длины обрабатываемой рыбы. В стеклянную чашку кладут сухие ватные тампоны. Можно пользоваться ватными помазками, изготовленными путем наматывания ваты на деревянную палочку или спичку без серной головки. Пойманную в аквариуме больную рыбу быстро, но осторожно, чтобы избежать травм, из сачка помещают во влажный ватный тампон таким образом, чтобьГвсе тело рыбы, за исключением участков, подлежащих обработке, было докрыто влажной ватой. Сухой ватный помазок или тампон смачивают в лечебном растворе и 3—4 раза прикладывают к пораженному месту. После этого рыбу выпускают в аквариум. Вся операция не должна длиться более 1 1/2—2 минут. Нельзя допускать попадания лечебного раствора в жабры.

Лечебные растворы готовят заново перед каждым случаем их применения. Рыбу обрабатывают 2 раза в сутки с интервалами в 12 часов до освобождения пораженных мест от паразитов. Рекомендуемый метод лечения применяют при сильном поражении теяа и плавников рыб грибами родов Saprolegnia и Ahlia, рачками аргулусами и лерниями, пиявками, а также для обработки серого налета при костиозе.


Для лечебных примочек используют два раствора:

1) 0,1%-ный водный раствор перманганата калия (1 г кристаллического KMnO4 на 1 л воды);

2) 0,05 %-ный водный раствор трипафлавина (0,5 г кристаллического трипафлавина на 1 л воды).

Примочки 1,5—2%-ного раствора ляписа (азотнокислого серебра AgNO3), рекомендованные В. Г. Бибенко и А. Л. Рижской для лечения костиоза в книге “Комнатные аквариумы” (Харьков, изд. “Прапор”, 1971), применять нельзя, поскольку растворы ляписа такой концентрации детальны (смертельны) для рыб.
__________________
Если тебе плюют в спину, то ТЫ идешь вперед...
Doc-tor зараз поза форумом   Відповісти з цитуванням
Реклама